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    靈芝與糙皮側(cè)耳原生質(zhì)體融合子基因組RAPD分析


    【發(fā)布日期】:2004-09-27  【來源】:
    【核心提示】:靈芝與糙皮側(cè)耳原生質(zhì)體融合子基因組RAPD分析王淑珍?1白晨??2?范俊?1高雁?1揚家峰?1揚英杰?1?(1上海

    靈芝與糙皮側(cè)耳原生質(zhì)體融合子基因組RAPD分析

    王淑珍?1 白 晨??2? 范 俊?1 高 雁?1 揚家峰?1 揚英杰?1

    ? (1 上海師范大學(xué)生命與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,上海 200234;

    ?? 2復(fù)旦大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院, 上海 200433)

    作為一種傳統(tǒng)的滋補強壯、扶正固本的珍貴藥用真菌,靈芝?(Ganoderma lucidum)幾千年來一直被廣泛用于臨床治療和人體保健。隨著科學(xué)技術(shù)的發(fā)展,近10年來對靈芝的栽培、菌絲體工業(yè)化深層發(fā)酵及有效成分的研究逐漸深入。隨著分子生物學(xué)和微生物遺傳學(xué) 研究的進展,應(yīng)用原生質(zhì)體融合技術(shù)進行靈芝種內(nèi)原生質(zhì)體融合的研究,以期獲得優(yōu)質(zhì)高產(chǎn)的靈芝菌株。然而,這些研究主要集中在栽培、有效成分、藥理及臨床應(yīng)用方面,未見通過 遺傳育種改變靈芝擔(dān)子果木栓質(zhì)化生物學(xué)特性的研究報道?,F(xiàn)己發(fā)現(xiàn),靈芝屬近百種靈芝的擔(dān)子果均呈軟木質(zhì)或木質(zhì)化,這種組織結(jié)構(gòu)不僅給靈芝的食用和藥用帶來許多加工工藝上的 麻煩,而且由于木栓質(zhì)化,使靈芝不能象其他肉質(zhì)和革質(zhì)食用菌那樣食用,所以不可能做到物盡其用。即使是深層發(fā)酵的靈芝菌絲體,口感也近似軟木質(zhì)化結(jié)構(gòu),難以咀嚼,如果加 工成食、藥用原輔料,微細化難度也遠大于一般食、藥用菌菌絲體。靈芝這種遺傳特性限制了其應(yīng)用范圍。近年來,利用外源遺傳信息改變遺傳特性的方法已成為遺傳育種中新的研究 焦點。若將外源DNA導(dǎo)入靈芝細胞,嵌入到細胞的遺傳物質(zhì)中,就有可能改變其木栓質(zhì)化遺傳特性。

    ?本研究旨在保持靈芝原保健功能的前提下,根據(jù)細胞工程和分子生物學(xué)理論,以肉質(zhì)食用菌擔(dān)子果為外源DNA供體,通過原生質(zhì)體融合技術(shù),探討改變其木栓質(zhì)化生物學(xué)特性的方法與技術(shù)。

    1 材料與方法

    ?? 1.1 菌株

    ?靈芝CJL990菌株系長白山野生紫芝的誘變高產(chǎn)菌株[1],由上海師范大學(xué)王淑珍研究組提供。糙皮側(cè)耳農(nóng)科2號,引自上海市農(nóng)業(yè)科學(xué)院。融合子F3、F8,由上海師范大學(xué)王淑珍研究組根據(jù)其優(yōu)良生物學(xué)特性初篩獲得。

    ? 1.2 試劑

    ?12種引物均由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,核苷酸序列見表1。

    ?表1 核苷酸序列及試驗編號

    Table 1 The experiment nos. and the nucleotide sequences of 12 primers

    試驗編號?Experiment nos.

    核苷酸序列(5’→3’)Sequences of the nucleotide

    試驗編號?Experiment no s.

    核苷酸序列(5’→3’)Sequences of the nucleotide

    01

    GGGTAACGCC

    07

    CTACTGCCGT

    02

    TGAGGGTCCC

    08

    TTATCGCCCC

    03

    GGTGCGGGAA

    09

    GAGTCTCAGG

    04

    GTGACATGCC

    10

    CACCAGGTGA

    05

    TCAGGGAGGT

    11

    CTTCACCCGA

    06

    AAGACCCCTC

    12

    TCACCACGGT

    ? LETS緩沖液組成:100mM LiCl 0.424g,10mM EDTA 0.372g,20mM Tris 0.242g,0 .5% SDS 0.5g。將上述試劑溶解在80mL重蒸水中,用鹽酸調(diào)節(jié)pH至7.8~8.0,定容至100mL,加入蛋白酶K,至終濃度為50mg/100mL。

    ?50×TAE緩沖液組成:Tris 242g,冰醋酸57.1mL,0.5M EDTA(pH8.0)100mL,加蒸餾水至 1L。

    ?上樣緩沖液組成:40%蔗糖,0.25%溴酚藍。

    ?苯酚∶氯仿∶異戊醇:于50mL水飽和苯酚中加入24mL氯仿和1mL異戊醇,使其配比為25∶2 4∶1。

    ?1.3 總DNA的提取??[2,3]?

    ?菌株接種于液體培養(yǎng)基中,于26℃培養(yǎng)10d后,過濾收集菌絲體。取0.1g菌絲體,無菌重 蒸水淋洗后用濾紙吸干,放入1.5mL的離心管中,每管加400μL LETS緩沖液,并用研棒研磨菌絲。加500μL苯酚、氯仿、異戊醇混合液(25∶24∶1),充分混勻,14000r/min離心10 min。取300μL上清液于一新的離心管中,加600μL(2倍體積)無水乙醇,混勻,14000r/min 離心10min,去上清液,真空干燥沉淀物后加40μL無菌重蒸水,溶解,用華舜公司的植物總 DNA抽提柱過柱純化,70%乙醇(或Wash Buffer)離心洗滌兩次,最后加20μL無菌重蒸水,于65℃洗脫。取1μL純化后的總DNA,用0.8%的瓊脂糖凝膠,在1×TAE緩沖系統(tǒng)中電泳檢測 。

    ?1.4 RAPD反應(yīng)

    ?模板DNA定量:用紫外分光光度計測定提取的不同菌株的DNA濃度,稀釋,使其終濃度為5~10ng/μL。

    ?RAPD反應(yīng)體系: 反應(yīng)體系的總體積為25μL, 其組分為2.5μL 10×PCR Buffer , 2μL2mM MgCl?2,1μL DMSO,1.5μL dNTP,1μL Taq酶(Sangon),5μL隨機 引物(3.3ng/ μL),1μL DNA稀釋模板(以ddH2O為空白對照),11μL ddH?2O。

    ?反應(yīng)條件:反應(yīng)在MJ Research PTC?225 PCR儀上進行。擴增反應(yīng)程序為:94℃ 變性5min,92℃變性1min,36℃退火1min,72℃延伸2min,共進行45個循環(huán),最后72℃補平 10min,終止溫度為4℃。

    ?產(chǎn)物檢測:取10μL反應(yīng)液,加2.5μL電泳樣品緩沖液,在1×TAE電泳緩沖體系中,用?1 .4%?瓊脂糖凝膠電泳分離DNA擴增片段,EB染色,于凝膠分析儀下觀察結(jié)果并拍照。

    ? 1.5 相似系數(shù)的統(tǒng)計

    ?對擴增DNA片段按相似率Sxy=2?Nxy/(Nx+Ny)×100%進行相似指數(shù)(Simi larity index)分析,其中Nxy是比較后兩種材料x和y共有的DNA片段數(shù)目,Nx和Ny分別為材料x和y各自的DNA擴增片段數(shù)目。

    2 結(jié)果

    ? 2.1 引物的篩選

    ?試驗所采用的12個隨機引物中,有4種引物能有效地同時對靈芝、糙皮側(cè)耳及其融合子的D NA進行擴增,它們分別是07、10、11和12號引物。用這4種隨機引物進行重復(fù)實驗,擴增出 的隨機片段大都在3.5kb~0.5kb之間(圖1,圖2)。

    表2 4種隨機引物的擴增譜帶

    ?Table 2 The amplication bands with 4 random primers

    供試材料?Materials tested

    譜 帶總數(shù)Total no.?of the bands

    GFP共同譜帶GFP common?bandsGP

    GP共同譜帶 GP common?bands

    GF共同譜帶GF common?bands

    FP共同譜

    FP common?b ands

    靈芝?G.lucidum? (G)

    52

    --

    12

    --

    --

    融合子 Fusant (F3)

    57

    9

    --

    35

    12

    融合子 Fusant (F8)

    60

    15

    --

    32

    20

    糙皮側(cè)耳 ?P.ostreatus? (P)

    40

    --

    12

    --

    --

    ? 1~6號泳道分別為G、 F3、 P、 G、 F3、 P用不同引物的擴增結(jié)果

    ?M為分子量標(biāo)記,從上到下依次為10kb、 8kb、 6kb、 5kb、 4kb、 3kb、 2kb、 1.5kb 、 1kb和0.5kb,N為空白對照

    ?Lanes 1~6 are the amplicons of G,F(xiàn)3,P,G,F(xiàn)3,P amplified with different pr imers

    ?M: Molecular weights from up to down are 10kb,8kb,6kb,5kb,4kb,3kb,2kb ,1.5kb,1kb and 0.5kb resp. N: The blank contrast

    ?

    圖1 融合子F3的RAPD分析?Fig.1RAPD analysis of fusant F3

    ?????????????

    ? 1~6號泳道分別為G、 F8、P、G、F8、P用不同引物的擴增結(jié)果

    ?M為分子量標(biāo)記,從上到下依次為10kb、8kb、6kb、5kb、4kb、3kb、2kb、1.5kb 、1kb和0.5kb,N為空白對照

    ?Lane 1~6 are the amplicons of G,F(xiàn)8,P,G,F(xiàn)8,P amplified with different pri mers

    ?M: Molecular weights from up to down are 10kb,8kb,6kb,5kb,4kb,3kb,2kb ,1.5kb,1kb and 0.5kb,resp. N: The blank contrast

    ?圖2 融合子F8的RAPD分析?Fig. 2 RAPD analysis of fusant F8

    ? 2.2 四個樣品擴增譜帶相似率

    ?根據(jù)表2的數(shù)據(jù)計算F3、F8兩融合子與兩親本的相似系數(shù):SGF3=64.2%,SGF8=57.1%;SPF3=24.7%,SPF8=40.0%;SGP=26.1%。

    ? 2.3 融合子和親本株擴增的譜帶類型

    ?從圖1和圖2擴增結(jié)果可見,靈芝與糙皮側(cè)耳相同的譜帶較少(S??GP?=26.1%)。二株融合子的平均SGF=60.65%,而SPF=32.35%,可見,融合子的生物學(xué)特性與靈芝更接近。

    3 討論

    ?3.1 本研究所制備的靈芝和糙皮側(cè)耳原生質(zhì)體,是采用雙層培養(yǎng)法進行原生質(zhì)體再生[4],將靈芝和糙皮側(cè)耳兩親本對潮霉素自然抗藥性的差異結(jié)合原生質(zhì)體滅活[ 5]作為融合子篩選的依據(jù)。

    ?3.2 根據(jù)RAPD原理,每種隨機引物擴增的1條譜帶代表了被擴增的基因組中的一個遺傳位點。因此,本研究中四種隨機引物總共檢查了靈芝的52個位點,兩株融合子的117個位點(平均每株58.5個),糙皮側(cè)耳的40個位點,表明融合子與兩親本基因組中的遺傳位點總數(shù)有差別。

    ?3.3 靈芝與糙皮側(cè)耳為不同目的大型藥用菌與食用菌。靈芝屬多孔菌目,靈芝屬;糙皮側(cè)耳屬傘菌目,側(cè)耳屬。兩者親緣關(guān)系較遠,其基因組內(nèi)的同源序列較少,只有當(dāng)引物結(jié)合 位點之間的序列區(qū)段在兩親本之間同源時,PCR擴增產(chǎn)物的帶型才會相同,從擴增結(jié)果來看,相同的譜帶較少(SGP=26.1%),差異明顯(圖1,圖2)。

    ?3.4 融合子的譜帶有的與靈芝相同,有的與糙皮側(cè)耳相同,其基因組DNA既有與靈芝同源的序列,又有與糙皮側(cè)耳同源的序列。筆者對靈芝、糙皮側(cè)耳原生質(zhì)體融合子基因組進行了 RAPD分析。初步證實,該融合子確為兩親本原生質(zhì)體融合后的融合子,將在此基礎(chǔ)上進一步做分子雜交[6,7]試驗。

    ?3.5 根據(jù)Williams等(1990)的實驗,RAPD符合孟德爾遺傳規(guī)律,雖然本實驗中發(fā)現(xiàn)雙親的共有譜帶基本上都可在融合子中找到,部分單親譜帶也出現(xiàn)在融合子中,但融合子的譜 帶不是雙親譜帶的簡單疊加,融合子中還出現(xiàn)了新的譜帶(圖1,圖2),這可能是融合后基因重組引起引物結(jié)合位點改變的結(jié)果。如果將融合子擴增譜帶分別與兩親本作比較,從融合 子與兩親本的相似系數(shù)來看,兩株融合子的平均SGF為60.65%,而SPF為32.35% ??梢钥闯鋈诤献优c靈芝更為接近,符合我們的育種目的。

    ?3.6 有關(guān)靈芝木栓質(zhì)化生物學(xué)特性改變與否及改變程度,目前仍在研究。

    ?? 參 考 文 獻

    ? [1] 王淑珍,白 晨. 靈芝孢子誘變與菌絲高長速菌株選育[J ].中國食用菌,2000,106(6):6~9.

    ?[2] Lee SB, Taylor JW.Isolation of DNA from fungal mycelia and singl e spore.In: PCR Protocols:A guide to methods and applications (Gelfand MA , Sninsky DH, White JJ, TJ Eds.)[M]. New York:Academic Press,1990,282~287 .

    ?[3] Sobral BWS, Honeycutt RJ. Hight output gentic mapping of p olyploids using PCR?generated markers[J]. Theor Appl Genet,1993,86:105~11 2.

    ?[4] 李 剛,李寶健.影響靈芝原生質(zhì)體再生的幾個因素[J].食用菌學(xué)報,1998,5 (3):12~17.

    ?[5] 彭衛(wèi)憲,陸大京.用滅活原生質(zhì)體融合進行高溫香菇育種[J].真菌學(xué)報,1987,6 (3):184~192.

    ?[6] 陳明杰,譚 琦.應(yīng)用RAPD技術(shù)對香菇融合菌株進行遺傳鑒定[J]. 食用菌學(xué)報,1997,4(4):17~20.

    ?[7]劉國振,劉振岳,賈建航,等.用RAPD方法對平菇、香菇屬間原生質(zhì)體融合 子的研究[J].遺傳,1995,2(1):7~11.

     
     
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